
原理
乳酸脱氢酶(LDH)是一种氧化还原酶(EC1.1.1.27),广泛存在于各种生物体中。它催化丙酮酸和乳酸相互转化,同时伴随着NADH 和NAD+的相互转化。在缺氧条件下,它将糖酵解的最终产物丙酮酸转化为乳酸。LDH定量是有临床意义的,因为某些LDH同工酶的血清水平反映了特定组织中的病理条件。当疾病、伤害或有毒物质损害组织时,细胞的乳酸脱氢酶释放到血液中。由于乳酸脱氢酶是一种相当稳定的酶,因此它已被广泛用于评估组织和细胞的损伤和毒性。CheKine™ 乳酸脱氢酶(LDH)活性检测试剂盒(微量法)提供了一种简单、简便的微量法,用于测定动植物组织、细胞、细菌、血清(浆)和其他生物液中的乳酸脱氢酶。在此微量法中,LDH将NAD还原为NADH,NADH与WST-8相互作用产生颜色,从而进行比色测定(λmax=450 nm)。
自备耗材
·酶标仪或可见分光光度计(能测450 nm处的吸光度)
·恒温箱、制冰机、低温离心机
·96孔板或微量玻璃比色皿、可调节式移液枪及枪头
·去离子水
·匀浆器(如果是组织样本)
试剂准备
注意:各组分(小管试剂)开盖前,请先低速离心。
1×Assay Buffer: 使用前,Assay Buffer (5×)用去离子水稀释5倍,浓度为1×Assay Buffer,平衡到室温;4℃保存。
Lactate: 即用型;整个实验过程中,冰上避光放置;分装避光保存于-20℃。
NAD: 即用型;整个实验过程中,冰上避光放置;分装避光保存于-20℃。
WST-8: 即用型;整个实验过程中,冰上避光放置;分装避光保存于-20℃。
Enhancer: 即用型;整个实验过程中,冰上避光放置;分装避光保存于-20℃。
Working Reagent:每孔准备55 µL工作液,现配现用:吸取31 µL 1×Assay Buffer,8 µL NAD, 5 µL WST-8, 1 µL Enhancer和10 μL Lactate混合均匀。
Lactate Dehydrogenase Standard (20 U/mL):把20 µL Lactate Dehydrogenase Standard (1 KU/mL)用980 μL 1×Assay Buffer稀释至20 U/mL,混合均匀;冰上避光放置;不稀释的标准品分装保存于-20℃。
标准曲线设置:按下表所示,用1×Assay Buffer将20 U/mL标准品稀释为20、16、12、8、4、2、1 U/mL的标准溶液。
序号 | 20 U/mL Standard体积(µL) | 1×Assay Buffer体积(µL) | 标准品浓度(U/mL) |
Std.1 | 200 | 0 | 20 |
Std.2 | 160 | 40 | 16 |
Std.3 | 120 | 80 | 12 |
Std.4 | 80 | 120 | 8 |
Std.5 | 40 | 160 | 4 |
Std.6 | 20 | 180 | 2 |
Std.7 | 10 | 190 | 1 |
注意:每次实验,请使用新配制的标准品;配制好的标准品需要在4 h之内使用。
样本制备
注意:建议使用新鲜样本。如果不立即使用,可将样品在-80℃下保存一个月。
1.动植物组织:称取约0.1 g样本,加入1 mL预冷的1×Assay Buffer,冰浴匀浆,10,000 g,4℃离心15 min,取上清液,置冰上待测。
2.细胞(菌):收集500万细胞(菌)到离心管内,用冷PBS清洗细胞(菌),离心后弃上清,加入1 mL 1×Assay Buffer,冰浴超声波破碎细胞(菌)5 min(功率20%或200 W,超声3 s,间隔7 s,重复30次),然后10,000 g,4℃离心15 min,取上清液,置冰上待测。
3.血清、血浆等液体样本:直接测定。
注意:如需测定蛋白浓度,推荐使用Abbkine货号:KTD3001的蛋白质定量试剂盒(BCA法)进行样本蛋白质浓度测定。
实验步骤
1.酶标仪或可见分光光度计预热30 min以上,调节波长到450 nm,可见分光光度计用去离子水调零。
2.操作表(下述操作在96孔板或微量玻璃比色皿中操作):
试剂 | 空白孔(μL) | 标准孔(μL) | 测定孔(μL) |
样本 | 0 | 0 | 50 |
Standards | 0 | 50 | 0 |
去离子水 | 50 | 0 | 0 |
Working Reagent | 50 | 50 | 50 |
1. 混匀后,37℃避光孵育30 min,测定450 nm处吸光度,空白孔记为A空,标准孔记为A标,测定孔记为A测。计算ΔA测=A测-A空,ΔA标=A标-A空。
注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果ΔA测小于0.001可适当加大样本量。如果ΔA测大于2.0,样本可用1×Assay Buffer进一步稀释,计算结果乘以稀释倍数,或减少提取用样本量。
结果计算
注意:我们为您提供的计算公式,包括推导过程计算公式和简洁计算公式。两者完全相等。建议以加粗的简洁计算公式为最终计算公式。
1. 标准曲线的绘制
以标准溶液浓度为y轴,ΔA标为x轴,绘制标准曲线。
2. LDH含量的计算
将样本的ΔA测代入方程得到y值(U/mL)。
(1) 按样本鲜重计算
LDH含量 (U/g 鲜重)=y×V样÷(W×V样÷V样总)×n=y÷W×n
(2) 按蛋白浓度计算
LDH含量 (U/mg 蛋白)=y×V样÷(V样×Cpr)×n=y÷Cpr×n
(3) 按样本体积计算
LDH含量 (U/mL)=y×V样÷V样×n=y×n
(4) 按细胞(菌)数量计算
LDH含量 (U/104 cells)=y×V样÷(500×V样÷V样总)×n=y÷500×n
V样:加入样本体积,0.05 mL;W:样本质量,g;V样总:加入1×Assay Buffer体积,1 mL;n:样本稀释倍数;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;500:细胞(菌)总数,500万。
结果展示

Figure 1. LDH的标准曲线。数据和曲线仅供参考,实验者需根据自己的实验建立标准曲线
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