谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性检测试剂盒实验解决方案
发布时间:2025-02-12
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原理
谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)是谷胱甘肽氧化还原循环中催化还原型谷胱甘肽(GSH)氧化的主要酶之一。GSH-Px不仅能够特异地催化还原型谷胱甘肽与活性氧(ROS)反应,生成氧化型谷胱甘肽(GSSG),从而保护生物膜免受ROS的损害,维持细胞的正常功能;而且具有保护肝脏、提高机体免疫力、拮抗有害金属离子对机体的伤害和增加机体抗辐射等能力。GSH-Px的活性中心是硒半胱氨酸,硒是GSH-Px的必需部分,测定GSH-Px的活力可以作为衡量机体硒水平的一项生化指标。CheKine™ 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性检测试剂盒提供了一种简单的检测方法,用于检测生物样本,如血清(浆)、动物组织、细胞、细菌样本中GSH-Px的活性。GSH-Px催化H2O2氧化GSH,产生GSSG;谷胱甘肽还原酶(GR)催化NADPH还原GSSG,再生GSH,同时NADPH氧化生成NADP+;NADPH在340 nm有特征吸收峰,而NADP+没有;通过测定340 nm光吸收减少速率来计算GSH-Px活性。
自备耗材
·酶标仪或紫外分光光度计(能测340 nm处的吸光度)
·恒温箱
·96孔UV板或微量石英比色皿、可调节式移液枪及枪头
·低温离心机
·去离子水
·匀浆器(如果是组织样本)
试剂准备
Assay Buffer:即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。
Working Substrate:临用前配制,Substrate加入20 mL Assay Buffer,充分溶解;未用完的试剂分装避光于-20℃保存1个月。
GR:即用型;使用前,平衡到室温;4℃避光保存。
Working H2O2:临用前配制,吸取21.5 μL H2O2加入5 mL去离子水,充分混匀,配制好的试剂当天使用;4℃避光保存。
Working Reagent:临用前配制,根据样本数量,按照2 mL Working Substrate加入1 μL GR的比例配制,再加6 mL的Assay Buffer混匀(当天用完);Working Regent在25℃(其他物种)或者37℃(哺乳动物)水浴中预热30 min以上。
样本制备
注意:推荐使用新鲜样本,如果不立即进行实验,样本可在-80℃保存1个月。
1. 组织样本:用冷的PBS清洗组织,尽可能去除血液。吸干组织上的水分,称重。称取0.1 g组织样本,加入1 mL预冷的Assay Buffer,快速冰上匀浆。匀浆后的样本,10,000 g,4℃离心10 min,取上清液,置冰上待测。
2. 血清(浆):直接测定(如需要可用生理盐水稀释不同倍数)。
3. 细胞、细菌:收集500万细胞或细菌到离心管内,用冷PBS清洗细胞,离心后弃上清,加入1 mL预冷的Assay Buffer,冰浴超声波破碎细胞或细菌5 min(功率20%或200 W,超声3 s,间隔7 s,重复30次),然后10,000 g,4℃离心10 min,取上清液,置冰上待测。
注意:样品处理等过程均需要在冰上进行,且须在当日测定酶活力;细胞中GSH-Px活性测定时,细胞数目须在300万-500万之间,细胞中GSH-Px的提取时可加Assay Buffer后研磨或超声波处理,不能用细胞裂解液处理细胞。如需测定蛋白浓度,推荐使用Abbkine货号:KTD3001的蛋白质定量试剂盒(BCA法)进行样本蛋白质浓度测定。
实验步骤
1. 酶标仪或紫外分光光度计预热30 min以上,调节波长至340 nm,紫外分光光度计用去离子水调零。
2. Working Regent于 25℃(一般物种)或者 37℃(哺乳动物)孵育30 min。
3. 在96孔UV板或微量石英比色皿中按照如下方式加样:
试剂 | 空白孔(μL) | 测定孔(μL) |
去离子水 | 20 | 0 |
Sample | 0 | 20 |
Working Reagent | 160 | 160 |
Working H2O2 | 20 | 20 |
4. 充分混匀,空白孔在340 nm处第10 s和第10 min 10 s的吸光值,分别记为 A1,A2,测定孔在340 nm处第10 s和第10 min 10 s的吸光值,分别记为 A3,A4,计算ΔA空=A1 -A2,ΔA测=A3-A4。
注意:空白孔只需做1-2个即可。实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。测定反应的温度对测定结果有影响,请控制在25℃(一般物种)或者37℃(哺乳动物)。如果ΔA测小于0.005可适当加大样本量。如果ΔA测大于1.0,样本可用Assay Buffer进一步稀释,计算结果乘以稀释倍数,或减少提取用样本量。
结果计算
注意:我们为您提供的计算公式,包括推导过程计算公式和简洁计算公式。两者完全相等。建议以加粗的简洁计算公式为最终计算公式。
A.使用96孔UV板测定的计算公式如下:
1. 按蛋白浓度计算
GSH-Px 活力单位定义:在25℃或37℃温度下,每毫克蛋白每分钟催化1 nmol NADPH 氧化。
GSH-Px (U/mg prot)=[ (ΔA测-ΔA空)÷(ε×d)×V反总×109]÷(Cpr×V样)÷T=321.6×(ΔA测-ΔA空)÷Cpr
2. 按样本鲜重计算
GSH-Px 活力单位定义:在25℃或37℃温度下,每克样品每分钟催化1 nmol NADPH氧化。
GSH-Px (U/g 鲜重)=[(ΔA测-ΔA空)÷(ε×d)×V反总×109]÷(V样÷V样总×W)÷T=321.6×(ΔA测-ΔA空)÷W
3. 按细胞或细菌数量计算
GSH-Px 活力单位定义:在25℃或37℃温度下,每104个细胞或细菌每分钟催化1 nmol NADPH氧化。
GSH-Px(U/104)=[(ΔA测-ΔA空)÷(ε×d)×V反总×109]÷(500×V样÷V样总)÷T=321.6×(ΔA测-ΔA空)÷500
4. 按液体体积计算
活性单位定义:在25℃或37℃温度下,每毫升液体每分钟催化1 nmol NADPH氧化。
GSH-Px(U/mL)=[(ΔA测-ΔA空)÷(ε×d)×V反总×109]÷V样÷T=321.6×(ΔA测-ΔA空)
ΔA空=A1 -A2,ΔA测=A3-A4;ε:NADPH摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:96孔UV板光径,0.5 cm;V反总:反应体系总体积,200 μL=2×10-4 L;109:1 mol=1×109 nmol;Cpr:上清液蛋白浓度(mg/mL);W:样品质量,g;V样:加入反应体系中上清液体积,20 μL =2×10-2 mL;V样总:提取液体积,1 mL;T:反应时间,10 min;500:细胞或细菌数量,500万。
B.使用微量石英比色皿测定的计算公式
将上述计算公式中的光径d: 0.5 cm调整为d: 1 cm进行计算即可。
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